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    FluorPen FP110手持式葉綠素熒光儀用于實驗室、溫室和野外快速測量植物葉綠素熒光參數(shù)，具有便攜性強、精確度高、性價比高等特點；雙鍵操作，具圖形顯示屏，內(nèi)置鋰電和數(shù)據(jù)存儲，廣泛應用于研究植物的光合作用、脅迫監(jiān)測、除草劑檢測或突變體篩選，還可用于生態(tài)毒理的生物檢測，如通過不同植物對土壤或水質(zhì)污染的葉綠素熒光響應，找出敏感植物作為生物傳感器用于生物檢測。 FluorPen FP110手持式葉綠素熒光儀配備多種葉夾型號，用于不同的樣品與研究。

應用領(lǐng)域

 適用于光合作用研究和教學，植物及分子生物學研究，農(nóng)業(yè)、林業(yè)，生物技術(shù)領(lǐng)域等。研究內(nèi)容涉及光合活性、脅迫響應、農(nóng)藥藥效測試、突變篩選等。

· 植物光合特性研究

· 光合突變體篩選與表型研究

· 生物和非生物脅迫的檢測

· 植物抗脅迫能力或者易感性研究

· 農(nóng)業(yè)和林業(yè)育種、病害檢測、長勢與產(chǎn)量評估

· 除草劑檢測

· 教學

功能特點：

• 結(jié)構(gòu)緊湊、便攜性強，LED光源、檢測器、控制單元集成于僅手機大小的儀器內(nèi)，重量僅188g
• 功能強大，是葉綠素熒光技術(shù)的結(jié)晶產(chǎn)品，具備了大型熒光儀的所有功能，可以測量所有葉綠素熒光參數(shù)
• 內(nèi)置了所有通用葉綠素熒光分析實驗程序，包括3套熒光淬滅分析程序、3套光響應曲線程序、OJIP快速熒光動力學曲線等
• 高時間分辨率，可達10萬次每秒，自動繪出OJIP曲線并給出26個OJIP–test參數(shù)
• FluorPen專業(yè)軟件功能強大，可下載、展示葉綠素熒光參數(shù)圖表，也可以通過軟件直接控制儀器進行測量

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• 具備無人值守自動監(jiān)測功能
• 內(nèi)置藍牙與USB雙通訊模塊，GPS模塊，輸出帶時間戳和地理位置的葉綠素熒光參數(shù)圖表
• 配備多種葉夾型號：固定葉夾式（適于實驗室內(nèi)暗適應或夜間快速測量）、分離葉夾式（適用于野外暗適應測量）、探頭式（透明光纖探頭，具備葉片固定裝置，用于非接觸性測量監(jiān)測或光適應條件下的葉綠素熒光監(jiān)測）、用戶定制式等
• 可選配野外自動監(jiān)測式熒光儀，防水防塵設(shè)計

測量程序與功能

· Ft：瞬時葉綠素熒光,暗適應完成后Ft＝F₀

· QY：量子產(chǎn)額，表示光系統(tǒng)II 的效率，等于Fv/Fm(暗適應狀態(tài))或ΦPSII (光適應狀態(tài))。

· OJIP：快速熒光動力學曲線，用于研究植物暗適應后的快速熒光動態(tài)變化

· NPQ：熒光淬滅動力學曲線，用于研究植物從暗適應到光適應狀態(tài)的熒光淬滅變化過程。

· LC：光響應曲線，用于研究植物對不同光強的熒光淬滅反應。

· PAR：光合有效輻射，測量環(huán)境中植物生長可以利用的400-700nm實際光強（限PAR型號）。

技術(shù)參數(shù)

• 測量參數(shù)包括F₀、Ft、Fm、Fm’、QY、QY_Ln、QY_Dn、NPQ、Qp、Rfd、PAR（限PAR型號）、Area、Mo、Sm、PI、ABS/RC等50多個葉綠素熒光參數(shù)，及3種給光程序的光響應曲線、3種熒光淬滅曲線、OJIP曲線等
• OJIP–test時間分辨率為10µs（每秒10萬次），給出OJIP曲線和26個參數(shù)，包括F₀、Fj、Fi、Fm、Fv、Vj、Vi、Fm/F₀、Fv/F₀、Fv/Fm、Mo、Area、Fix Area、Sm、Ss、N、Phi_Po、Psi_o、Phi_Eo、Phi–Do、Phi_Pav、PI_Abs、ABS/RC、TRo/RC、ETo/RC、DIo/RC等
• 測量程序：Ft、QY、OJIP、NPQ1、NPQ2、NPQ3、LC1、LC2、LC3、PAR（限PAR型號）、Multi無人值守自動監(jiān)測
• 葉夾類型：FP110/S固定葉夾式、FP110/D分離葉夾式、FP110/P探頭式、FP110/X用戶定制式

• PAR傳感器（限PAR型號）：80º入射角余弦校正，讀數(shù)單位µmol(photons)/m².s，可顯示讀數(shù)，檢測范圍400-700 nm
• 測量光：每測量脈沖0.09µmol(photons)/m².s，10-100%可調(diào)
• 光化學光：10-1000µmol(photons)/m².s可調(diào)
• 飽和光：3000µmol(photons)/m².s，10-100%可調(diào)
• 光源：標準配置藍光470nm，可根據(jù)需求配備不同波長的LED光源
• 檢測器：PIN光電二極管，667–750nm濾波器
• 尺寸大小：超便攜，手機大小，134×65×33mm，重量僅188g
• 存貯：容量16Mb，可存儲149000數(shù)據(jù)點
• 顯示與操作：圖形化顯示，雙鍵操作，待機8分鐘自動關(guān)閉
• 供電：可充電鋰電池，USB充電，連續(xù)工作48小時，低電報警
• 工作條件：0–55℃，0–95%相對濕度（無凝結(jié)水）
• 存貯條件：-10–60℃，0–95％相對濕度（無凝結(jié)水）
• 通訊方式：藍牙+USB雙通訊模式
• GPS模塊：內(nèi)置
• 軟件：FluorPen1.1軟件，用于數(shù)據(jù)下載、分析和圖表顯示，輸出Excel數(shù)據(jù)文件及熒光動力學曲線圖，適用于Windows 7及更高操作系統(tǒng)

操作軟件與實驗結(jié)果

產(chǎn)地：捷克

應用案例：

    2017年4月，美國國家航空航天局（NASA）新一代*進植物培養(yǎng)器（Advanced Plant Habitat，APH）搭載聯(lián)盟號MS-04貨運飛船抵達空間站。宇航員使用FluorPen手持儀葉綠素熒光儀在其中開展植物生理學及太空食物種植（growth of fresh food in space）的研究。

參考文獻

• F Dang, et al. 2019. Discerning the Sources of Silver Nanoparticle in a Terrestrial Food Chain by Stable Isotope Tracer Technique. Environmental Science & Technology 53(7): 3802-3810
• N Moghimi, et al. 2019. New candidate loci and marker genes on chromosome 7 for improved chilling tolerance in sorghum. Journal of Experimental Botany 70(12): 3357–3371
• M Rafique, et al. 2019. Potential impact of biochar types and microbial inoculants on growth of onion plant in differently textured and phosphorus limited soils. Journal of Environmental Management 247: 672-680
• P Soudek, et al. 2019. Thorium as an environment stressor for growth of Nicotiana glutinosa plants. Environmental and Experimental Botany 164: 84-100
• JA Pérez-Romero, et al. 2019. Investigating the physiological mechanisms underlying Salicornia ramosissima response to atmospheric CO₂ enrichment under coexistence of prolonged soil flooding and saline excess. Plant Physiology and Biochemistry 135: 149-159
• D Shao, et al. 2019. Physiological and biochemical responses of the salt-marsh plant Spartina alterniflora to long-term wave exposure. Annals of Botany, DOI: 10.1093/aob/mcz067
• C Cirillo, et al. 2019. Biochemical, Physiological and Anatomical Mechanisms of Adaptation of Callistemon citrinus and Viburnum lucidum to NaCl and CaCl₂ Salinization. Front. Plant Sci. 10:742

附：OJIP參數(shù)及計算公式

Bckg = background

Fo: = F50µs; fluorescence intensity at 50 µs

Fj: = fluorescence intensity at j-step (at 2 ms)

Fi: = fluorescence intensity at i-step (at 60 ms)

Fm: = maximal fluorescence intensity

Fv: = Fm - Fo (maximal variable fluorescence)

Vj = (Fj - Fo) / (Fm - Fo)

Fm / Fo = Fm / Fo

Fv / Fo = Fv / Fo

Fv / Fm = Fv / Fm

Mo = TRo / RC - ETo / RC

Area = area between fluorescence curve and Fm

Sm = area / Fm - Fo (multiple turn-over)

Ss = the smallest Sm turn-over (single turn-over)

N = Sm . Mo . (I / Vj) turn-over number QA

Phi_Po = (I - Fo) / Fm (or Fv / Fm)

Phi_o = I - Vj

Phi_Eo = (I - Fo / Fm) . Phi_o

Phi_Do = 1 - Phi_Po - (Fo / Fm)

Phi_Pav = Phi_Po - (Sm / tFM); tFM = time to reach Fm (in ms)

ABS / RC = Mo . (I / Vj) . (I / Phi_Po)

TRo / RC = Mo . (I / Vj)

ETo / RC = Mo . (I / Vj) . Phi_o)

DIo / RC = (ABS / RC) - (TRo / RC)